依据科研计划书中科研方法部分(一个是按照实验设计思路写的,一个是具体的实验方法),设计一个技术路线图...
創建於:2025年12月29日
使用 GPT-5.2 Pro 回答 Chat01
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已根据你计划书里“总体实验设计思路 + 具体实验方法”把建模→取材→分流做哪些实验→得到哪些读出/结论串成一张更“可实施”的技术路线图,并做成了可编辑PPT版(方便你直接截图/导出图片放进计划书)。
同时附上一个可复制的 Mermaid 技术路线图代码(你也可以用它在支持Mermaid的工具里一键生成图,再截图插入Word)。
(科研计划书_焦_12.28.docx) (科研计划书_焦_12.25.docx)
mermaidflowchart TB %% ========================= %% ① 建模与时间轴 %% ========================= subgraph A[① 模型构建与时间轴(同一模型贯穿:表型确认→机制解析→干预验证)] A0[小鼠准备\n供体:Mx1-Cre;Jak2V617F & WT\n受体:Ldlr-/-(6–8周雌鼠)\n随机分组+盲法编码] --> A1[供体诱导\npI:pC 10 mg/kg i.p. q48h×3\n等待约4周稳定表达] A1 --> A2[骨髓移植建模\n受体10.5 Gy致死照射(分次)\n尾静脉注射5×10^6 BM细胞] A2 --> A3[嵌合分组(含CHIP模拟)\nWT→Ldlr-/-(对照)\nJak2V617F→Ldlr-/-(全量嵌合)\n20%Jak2V617F+80%WT→Ldlr-/-(低负荷/CHIP)] A3 --> A4[造血重建4–6周\nQC:外周血流式(嵌合率:GFP或CD45.1/2)\n+血常规(NEU/PLT等)] A4 --> A5[WTD诱导动脉粥样硬化\n约7周(~21%脂肪,0.15–0.2%胆固醇)] A5 --> A6[体内干预(因果性验证)\nWTD第4–6周启动\n雷帕霉素(mTOR抑制) ± HIF通路调控\n毒性/耐受监测:体重、血常规、肝肾功能] end %% ========================= %% ② 终点取材与样本分配 %% ========================= A6 --> B[② 终点取材与样本分配(血液—血管—分选—多模态检测)] B --> B1[血液(心穿)\nEDTA:流式/分选/功能实验\n血清或肝素:血脂 + 炎症因子 + 组学] B --> B2[主动脉根部(组织学主阵地)\n固定切片:H&E / Masson或天狼猩红\nIF/IHC:Ly6G/MPO、p-S6、HIF-1α等] B --> B3[全主动脉铺片\nOil Red O:脂质沉积面积] B --> B4[主动脉弓\n酶消化→单细胞流式\n分选Ly6G+CD11b+中性粒细胞\n用于Phosflow/WB/qPCR/RNA-seq/代谢探针/功能实验] %% ========================= %% ③ 三大实验模块 %% ========================= subgraph C[③A 表型解析:先确认“斑块结局↑ + 中性粒细胞异常↑”】【表型】] C1[斑块负担/稳定性\nH&E:斑块面积、坏死核心\nMasson/天狼猩红:胶原/纤维帽\nORO铺片:整体脂质负担] C2[斑块中性粒细胞浸润\nIF/IHC:Ly6G、MPO\n流式:CD45+Ly6G+CD11b+数量/比例] C3[中性粒细胞激活与NETosis\nROS:DHR123/化学发光\nNETs:SYTOX Green + CitH3/MPO-DNA验证\nNPA:Ly6G+细胞表面CD41/CD42b] C4[表型结论读出\nJak2V617F组:浸润↑、NETosis/ROS/NPA↑\n伴随斑块面积↑、坏死核心↑、稳定性下降] end subgraph D[③B 机制解析:mTOR–HIF‑1α → 脂代谢重编程 → 功能放大”】【机制】] D1[通路激活证据\n组织:Ly6G共定位p-S6、HIF-1α\n细胞:Phosflow(p-S6/p-4EBP1)、核内HIF-1α\nWB/qPCR:通路及靶基因(Glut1/Hk2/Ldha等)] D2[代谢表型(中性粒细胞)\n脂滴:BODIPY 493/503\n脂肪酸摄取:BODIPY FL C16\n游离胆固醇:filipin\n可选:13C示踪区分丰度 vs 通量] D3[组学网络\n分选Ly6G+ RNA-seq→GSEA(mTOR/HIF/脂代谢)\n血浆/中性粒细胞/斑块脂质组&代谢组] D4[机制链条读出\n“通路↑ → 脂代谢↑ → NETosis/黏附/趋化↑”\n形成闭环证据链] end subgraph E[③C 干预与转化:验证“抑制通路→代谢可逆→功能可逆→结局改善”】【干预】] E1[体内干预终点\n雷帕霉素±HIF调控后:复测斑块负担/稳定性\n同步检测血脂/炎症因子\n靶点命中:p-S6/HIF-1α变化] E2[体外/离体干预\n分离/分选中性粒细胞短时加药\n检测:p-S6/HIF-1α、脂滴/摄取/胆固醇\n功能:NETosis/ROS、趋化(Transwell)] E3[炎症-血栓轴与内皮互作\n活体显微镜:滚动/黏附\n剪切流黏附:Ibidi μ-slide(ICAM-1/VCAM-1/P-selectin)\nNPA变化] E4[干预结论读出\n通路抑制 → 代谢下降 → NETosis/黏附下降\n→ 斑块负担下降/稳定性改善\n并沉淀生物标志物(p-S6、HIF-1α、脂滴/NETs)] end %% 连接样本到模块 B --> C B --> D B --> E
| 阶段 | 取材/样本 | 主要去向(做哪些实验) | 关键读出(你路线图里要写清的“结果”) |
|---|---|---|---|
| 建模QC | 外周血 | 嵌合率(GFP或CD45.1/2流式)、血常规 | 模型质量控制:嵌合成功;NEU/PLT等作为协变量/表型线索 |
| WTD+干预过程 | 体重、一般状态;血常规;肝肾功能 | 安全性/耐受性监测 | 确保干预可解释:排除明显毒性导致的假阳性/假阴性 |
| 终点-血液 | EDTA血 | 流式:NPA(Ly6G+CD41/42b);中性粒细胞分离后做ROS/NETosis;必要时分选Ly6G+用于通路检测 | 炎症-血栓轴/NETosis功能读出:Jak2V617F组↑;干预后↓ |
| 终点-血清/血浆 | 血清/肝素血 | 血脂(TC/TG/HDL-C);炎症因子(IL‑1β、TNF‑α、IL‑6、CXCL1/2等);可做代谢组/脂质组 | 系统层面协同证据:炎症负荷与斑块结局/中性粒细胞表型联动;干预后改善 |
| 终点-主动脉根部 | 固定切片 | H&E:斑块面积、坏死核心;Masson/天狼猩红:胶原/纤维帽;IF/IHC:Ly6G/MPO、p‑S6、HIF‑1α(与Ly6G共定位) | 斑块结局 + 通路在位证据:Jak2V617F组斑块更重/更不稳;p‑S6/HIF‑1α在Ly6G+细胞中↑ |
| 终点-全主动脉 | 铺片 | Oil Red O | 整体斑块负担宏观读出:Jak2V617F组↑;干预后↓ |
| 终点-主动脉弓单细胞 | 酶消化细胞悬液 | 流式定量浸润中性粒细胞(CD45+Ly6G+CD11b+);分选Ly6G+做Phosflow/WB/qPCR/RNA-seq/代谢探针 | “浸润↑ + 通路↑ + 代谢↑”细胞层证据链 |
| 分离/分选中性粒细胞(血/主动脉弓) | 纯化Ly6G+细胞 | Phosflow:p‑S6/p‑4EBP1;核内HIF‑1α;代谢探针:BODIPY493/503、BODIPY‑C16、filipin;功能:NETosis/ROS/趋化 | 核心机制闭环:mTOR–HIF‑1α激活 → 脂代谢重编程 → NETosis/黏附/趋化增强;药物可逆 |
| 血栓相关/内皮互作模块 | 活体显微镜、剪切流黏附系统 | 滚动/黏附计数;Ibidi μ-slide(ICAM‑1/VCAM‑1/P-selectin)黏附定量 | “炎症-血栓轴”功能终点:Jak2V617F组增强;干预下降 |
为了让路线图“像真的会做、且能回答问题”,图中每个模块建议都配一句比较关系 + 结论:
如果你希望我把这张路线图按你学校常用格式再做一个“更像论文图1”的版本(比如横向时间轴+下方三栏模块、或按“研究内容1/2/3”三段式),我也可以直接在你这份PPT里改出第二版排版给你对比使用。